Verwendete Methoden

CD-Spektroskopie

Strukturaufklärung  von chiralen (Bio)Molekülen und Untersuchung ihrer Wechselwirkungen mit anderen Molekülen

EPR-Spektroskopie

Elektronenspinresonanz-Messungen paramagnetischer Substanzen auch mit Bestrahlung

Fluoreszenzspektroskopie

Fluorimetrische Messungen

Fluoreszenz-Quantenausbeute

Bestimmung der Quantenausbeute im Bereich 300-950 nm

IR-Spektroskopie

Aufnahme von IR-Spektren in Transmission mit KBr- bzw. CsI-Pressling (4000-500 cm⁻¹ bzw. 1000-80 cm⁻¹) bzw. abgeschwächte Totalreflexion mit ATR-Einheit mit Diamant- bzw. ZnSe-Kristall (30000-200 cm⁻¹ bzw. 20000-500 cm⁻¹)

UV/VIS-Spektroskopie

Messung der Absorption im Bereich 190–900 nm (Flüssigkeiten und Feststoffe), temperaturabhängige Messungen mit Sechsfachküvettenwechsler

Cyclovoltammetrie

Bestimmung von Redoxpotentialen in organischen Lösemitteln oder wässriger Lösung

Potentiometrie

Potentiometrische pH-Titrationen

Spektroelektrochemie

Simultane Bestimmung des Redoxpotentials und der Absorption im UV/VIS/NIR-Bereich

AAS

Atomabsorption mittels Flammen-, Graphitrohr- und Hydridtechnik zur Analyse von Metallen und Halbmetallen

ICP-MS

Gehaltsbestimmung von Elementen mittels doppelt fokussierendem hochauflösendem Massenspektrometer (nicht Halogene, Edelgase, Kohlenstoff, Stickstoff, Wasserstoff, Sauerstoff)

ICP-OES

Gehaltsbestimmung von Elementen mittels Atom- und Ionenemission (außer Halogene, Edelgase, Kohlenstoff, Stickstoff, Wasserstoff, Sauerstoff)

Aufschlussmikrowelle

saure und basische Aufschlüsse von festen Stoffen

Säuredestillation

Säureaufreinigung nach dem Subboiling-Prinzip

GC-MS

Trennung und Identifizierung von (flüchtigen) organischen Substanzen über Gaschromatographie bekoppelt mit Massenspektrometrie

Gelelektrophorese

Auftrennung und Analyse von Protein(fragment)en (vertikal, PAGE) und DNA (horizontal, Agarose)

Gelscanner

Visualisierung und Quantifizierung von Gelelektrophorese-Experimenten mit verschiedenen Einsätzen (Trays) je nach Gelfärbe-Methode:

• UV Sample Tray (für Bestrahlung mit UV-Licht)
• Stain-free Sample Tray (für ungefärbte Gele)
• White Sample Tray (Coomassie Blau-, Kupfer-, Silber-, Zink-Färbung)

HPLC

Aufreinigung (semi-präparativ, max. 50 mg) und Reinheitsbestimmung (analytisch) mit Autosampler für organische Verbindungen insbesondere Peptide

Inkubieren und Mischen

Inkubation von Lösungen in Eppendorf-Gefäßen (0,5 und 1,5 mL) im Temperaturbereich 1–100 °C bei max. 3000 rpm, Zentrifugieren und Vortexen

Lyophilisator

Gefriertrocknung von wässrigen Proben

Synthese

• Organische Synthese und Koordinationschemie, teilweise unter Inertgasatmosphäre
• Reaktionen im Parallelsynthesereaktor im kleinen Maßstab (mit Bestrahlung möglich)
• Festphasenpeptidsynthese und Biokonjugatchemie

Zentrifuge

Zentrifugation von Falcon-Tubes (15 und 50 mL) und Eppendorf-Gefäßen (1,5 und 2 mL) im Temperaturbereich -9 bis 40 °C bei max. 4400 rpm